MolPure磁珠法残留DNA样本前处理试剂盒(瓶装)-生物分子-试剂-生物在线
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MolPure磁珠法残留DNA样本前处理试剂盒(瓶装)

MolPure磁珠法残留DNA样本前处理试剂盒(瓶装)

商家询价

产品名称: MolPure磁珠法残留DNA样本前处理试剂盒(瓶装)

英文名称: MolPure® Magnetic Residual DNA Sample Preparation Kit 磁珠法残留DNA样本前处理试剂盒(瓶装)

产品编号: 18461ES60

产品价格: 0

产品产地: 翌圣生物

品牌商标: Yeasen

更新时间: 2023-08-17T13:40:59

使用范围: null

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产品信息

 

产品名称

产品编号

规格

价格(元)

MolPure® Magnetic Residual DNA Sample Preparation Kit磁珠法残留DNA样本前处理试剂盒(瓶装)

18461ES25

25 T

425.00

18461ES60

100T

1,395.00

 

产品描述

 

MolPure® Magnetic Residual DNA Sample Preparation Kit适用于生物制品样本中残留DNA检测的前处理。采用独特的磁珠和精心优化的缓冲体系,可最大限度的分离纯化样本中的微量宿主细胞残留DNA。

该前处理试剂盒可与多种宿主细胞DNA残留qPCR法)检测试剂盒配合使用,包括CHO宿主细胞残留DNA检测试剂盒(Cat#41301)、HEK293宿主细胞残留DNA检测试剂盒(Cat#41302)、Vero宿主细胞残留DNA检测试剂盒(Cat#41303)和E.coli残留DNA检测试剂盒(Cat#41304)。

 

产品组分

 

类别

组分编号

组分名称

产品编号/规格

18461ES25(25 T)

18461ES60(100 T)

Part I

18461-A

蛋白酶K(20 mg/mL)

0.5 mL/支×1支

1 mL/支×2支

Part Ⅱ

18461-B

磁珠悬浮液

0.5 mL/支×1支

1 mL/支×2支

18461-C

裂解液

2.5 mL/瓶×1瓶

10 mL/瓶×1瓶

18461-D

结合液

10 mL/瓶×1瓶

40 mL/瓶×1瓶

18461-E

洗涤液A*

6 mL/瓶×1瓶

(需加9 mL乙醇)

24 mL/瓶×1瓶

(需加36 mL乙醇)

18461-F

洗涤液B*

3 mL/瓶×1瓶

(需加12 mL乙醇)

12 mL/瓶×1瓶

(需加48 mL乙醇)

18461-G

洗脱液

2.5 mL/瓶×1瓶

10 mL/瓶×1瓶

Part Ⅲ

18461-H

糖原

225 μL/支×1支

900 μL/支×1支

18461-I

Poly A钾盐

150 μL/支×1支

600 μL/支×1支

 

运输和保存方法

 

Part I组分室温运输,4℃可保存1年,长期保存于-20℃。

Part II组分室温运输,室温保存,有效期1年。

Part Ⅲ 组分冰袋运输,-20℃保存1年。

 

注意事项

1. 注意观察常温保存溶液是否有析出或浑浊(尤其冬季等室温为低温环境时),可37℃水浴至溶液澄清,避免影响使用效果。
2. 洗脱时可能存在磁珠残留,吸取样本时应尽量避免吸入磁珠。

3. 处理样本及加样时,勤换枪头,避免交叉污染。

4. 为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。

5. 本产品仅作科研用途!

 

实验前准备


1. 自备设备和试剂:磁性分离架、杭州奥盛Auto-
Pure32A核酸提取仪或其他全自动化提取仪,水浴锅或金属浴,离心机,漩涡振荡器,1.5 mL离心管,无水乙醇等。
2. 首次使用前,在洗涤液A*和洗涤液B*瓶中加入标签或说明书中注明体积的无水乙醇,充分混匀后使用,并做好标记。每次使用后将瓶盖盖紧,以保持瓶中的乙醇含量。

一、手工提取操作方法

1. 样本处理

a. 待测样本为疫苗等本身含有较高的DNA含量的样本,可用1×PBS(pH=7.4)对样本进行适当比例稀释后提取对样本进行稀释是为了保证检测的准确性,使样本的检测值在标准曲线线性范围之内,通常可考虑进行100倍稀释)

 b. 待测样本为干粉的,可用ddH2O将样本稀释成10 mg/mL或者100 mg/mL后使用。

c. 待测样本为复杂背景基质的,可根据需要进行加标回收实验,以确定合适的样本稀释倍数。

2. 取100 μL样本装于1.5 mL离心管中,加入100 μL裂解液,10 μL蛋白酶K,涡旋混匀10 sec

  【注】:样本蛋白浓度0-100 mg/mL,蛋白酶K用量为10 μL,样本蛋白浓度100-200 mg/mL,蛋白酶K用量为20 μL。

3. 60℃孵育20 min。

4. 孵育完成后,加入400 μL结合液、9 μL糖原、6 μL Poly A钾盐涡旋混匀。  

5. 加入20 μL磁珠,涡旋混匀后,放置10 min,每隔3 min涡旋混匀10 sec

  【注】:磁珠使用前需涡旋混匀,保证磁珠彻底重悬。在一次性加样4-5次后,建议再次混匀后再行加样。

6. 短暂离心后,将离心管置于磁力架上静置1-2 min,待磁珠完全吸附,小心吸液体。

7. 加入500 μL洗涤液A(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),振荡或涡旋混匀,确保磁珠分散,离心管壁无聚集磁珠。

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